2018年8月28日,德国马克思-普朗克化学生态研究所Ian T Baldwin团队在eLife上发表了题为Blumenols as shoot markers of root symbiosis with arbuscular mycorrhizal fungi的研究性论文。当前判断植物与AMF是否存在共生关系,主要是通过破坏性取样后的显微镜检或转录分析,这种方法既耗时又费力。本研究首次揭示了在植物地上部中有2种仅存在于植物-AMF共生体中的特异性布卢门醇,借助这种特异性地上部标记物能轻松判断植物是否与AMF建立了共生关系,为今后AMF研究提供了一种简便方案。
1. 前言
大多数高等植物都能与丛枝菌根真菌(arbuscular mycorrhizal fungi,AMF)建立共生关系。由于AMF具有促进植物吸收矿质养分和水分、增强植物抗逆性的积极作用,因此成为近几十年来的研究热点。接种AMF会影响植物的代谢反应,如影响糖类、蛋白质、氨基酸和其它次生代谢产物的合成。然而,在胁迫条件下这些代谢反应也会受到影响,即这些代谢产物并非AM共生体的特异性代谢产物。布卢门醇类化合物是一种脱辅基类胡萝卜素,是由类胡萝卜素裂解产生的,主要包括三种类型:布卢门醇A、布卢门醇B和布卢门醇C(图1)。有研究指出,AMF会引起植物根系布卢门醇C的积累,而其它外界因素均不会发生此类变化。不仅如此,布卢门醇同样也存在于植物地上部,但此前尚没在植物地上部发现AM共生体所特有的布卢门醇类化合物。
目前判断植物与AMF互作的方法耗时且费力,所以在植物地上部寻找一种稳定的代谢标记物对于AMF研究具有重要的实际意义。本文通过一系列试验,并使用多种植物材料和AMF菌种进行验证,在植株地上部鉴定出了2种实用性广的AM共生体特异性代谢标记物。
2. 材料与方法
2.1. 材料与设计
植物材料:烟草(Nicotiana attenuata)31代近交系(遗传稳定性强)、irCCaMK植株(RNAi沉默掉CCaMK基因后,植株无法与AMF建立共生,但植株生长和根系相关微生物不受影响)、i-irPDS植株(RNAi沉默掉PDS基因后,植株发生光漂白,以减轻类胡萝卜素合成对布卢门醇代谢的影响)以及各自的空载(EV)植株。
温室试验:试验包括接种异形根孢囊霉(Rhizophagus irregularis)和不接种(高温灭活的Rhizophagus irregularis)处理,成对比较试验中将irCCaMK植株和EV植株一起种于2 L盆中,其余温室试验均是将植株分开种于1 L的盆中。
大田试验:大田试验在美国莱特尔牧场保护区进行。
其它试验:苜蓿(Medicago truncatula)和二穗短柄草(Brachypodium distachyon)接种变形球囊霉(Glomus versiforme)后,置于美国博伊斯汤普森研究所的生长室生长;此外,德国莱布尼茨植物和观赏作物研究所的Michael Bitterlich博士负责番茄(Solanum lycopersicum)和马铃薯(Solanum tuberosum)试验,接种菌种为异形根孢囊霉(Rhizophagus irregularis DAOM 197198)或摩西管柄囊霉(Funneliformis mosseae BEG12)。
2.2. 胁迫处理
虫害处理:将烟草天蛾(Manduca sexta)幼虫置于植株叶片上,两周后取样,取样部位为烟草莲座叶。
细菌和病毒处理:将烟草脆裂病毒(Tobacco Rattle Virus)导入到根癌农杆菌(Agrobacterium tumefaciens)中,并使用注射器将细菌悬浊液浸润叶片,接种三周后取样。
真菌处理:将含有灰霉菌(Botrytis cinerea)孢子的悬浊液滴在叶片表面进行处理,在接种四天后取样。
干旱处理:停止浇水持续四天,然后取样,并记录两种水分处理导致的鲜重差。
2.3. 样品的提取与纯化
提取样品:100 mg植物叶片(或根系)+1 mL 80%甲醇+2颗铁珠,每分钟震荡1150次,1分钟后收集上清液用于分析。
纯化样品:使用45 μm的苯磺酸阳离子交换柱,去除掉样品的主要成分,如尼古丁和酚酰胺,纯化之后将样品烘干然后溶于80%的甲醇中。
纯化的根系和叶片提取物使用核磁共振鉴定其成分。
2.4. 其它试验方法
非靶向质谱分析:使用非区分串联质谱法(idMS/MS)、串联质谱法(MS2)和pseudo-MS3进行高分辨率质谱分析。
核磁共振分析化合物结构:纯化的样品用N2吹干后溶于甲醇溶液中,再用核磁共振仪分析化合物结构。
靶向代谢分析:使用超高液相色谱法进行色谱分离,以减少其它成分的干扰,增加该分析方法的特异性。
AMF侵染率:首先用WGA-Alexa Fluor 488荧光染料和台盼蓝染料将根段染色,然后使用显微镜记录菌根侵染率和菌根结构。此外,还通过提取根系RNA进行侵染率的分子生物分析。
转录组分析:对烟草根系脱辅基类胡萝卜素途径进行转录组分析。
布卢门醇转运试验:将烟草幼苗种于离心管中,用封口膜固定植株,并使幼苗根系与地上部分别位于管内和管外,管内装满0.5%的植物提取物——化合物1、化合物2(AMF诱导的特异性布卢门醇),或药剂——化合物6(非AMF诱导的特异性布卢门醇)(3种化合物的结构见图6C),且使用相同浓度的甲醇溶液作为对照,在生长室孵育24 h后取样分析。
八氢番茄红素脱氢酶(PDS)基因沉默:使用100 μM的地塞米松处理基部第二片茎叶,每周两次,持续三周,取样部位为处理叶片及其上下邻近叶片。
3. 结果与分析
3.1. 布卢门醇是根系中AMF特异性代谢指纹
将EV植株和irCCaMK植株同种于一个2 L容器中,试验处理包括接种/不接种异形根孢囊霉,6周后取根系进行非靶向代谢分析,共鉴定出了8种化合物,包括尼古丁、酚酰胺、酚醛树脂和5种未知化合物,根据其在不同处理时的含量变化确定了各物质的代谢模式,发现EV植株接种AMF后,根系中布卢门醇大量合成,而irCCaMK植株或不接种植株中布卢门醇含量微乎其微甚至不存在,这与前人研究结果吻合,因此布卢门醇可作为根系中AMF特异性代谢指纹(图2)。
3.2. 叶片中化合物1和2的水平与根系侵染率呈正相关
通过布卢门醇转运试验发现,化合物1和化合物2(分别为羟基类布卢门醇、羧基类布卢门醇)同样也在接种植株叶片中特异性聚集(图2D)。随后,通过普通接种试验、梯度接种试验、本地接种试验和大田试验,检测了AMF特异性叶片化合物1和化合物2与根系菌根侵染率的关系,发现叶片中两种化合物随着接种时间延长而稳定增加,接种3周后叶片中两种化合物的丰度便足以反应根系侵染率,且两种化合物与丛枝、泡囊和侵染率呈正相关,最后通过分析两种化合物与植株空间位置的关系发现,这两种化合物几乎遍布全株,即叶片中化合物1和化合物2的水平与菌根侵染率呈正比(图3)。最后通过基因转录丰度分析和胁迫处理试验,验证了化合物1和化合物2是AMF特异性诱导的特异性标记物,对AMF研究具有不可替代的作用(图4和图5)。
3.3. 地上部AMF特异性布卢门醇可能起源于植物根系
布卢门醇是一类脱辅基类胡萝卜素,源自类胡萝卜素合成途径的侧支。通过检测合成布卢门醇的候选基因发现,根系中大多数候选基因在接种后上调,而在叶片中并未出现这样的现象,即叶片中不能直接合成布卢门醇。因此提出假设:布卢门醇是在根系中合成然后转运至植株地上部的,因此使用地塞米松(DXE)诱导pOp6/LhGR系统,沉默掉PDS基因,以降低类胡萝卜素合成对植物-AMF互作的影响。试验发现非特异性化合物6含量显著降低,而AMF特异性化合物1和化合物2含量未受影响,且在根系中聚集,此结果验证了化合物1和化合物2并非在叶片合成,而是源自于根系。为进一步验证布卢门醇可从植物根系运输至地上部,该团队进行了布卢门醇转运试验,发现布卢门醇可通过根系扩散至全株。
3.4. 植物地上部AMF特异性布卢门醇分析可作为正向遗传学高通量筛选工具
为检测AMF特异性布卢门醇作为筛选工具的可行性,该团队测定了重组近交系(犹他州烟草×亚利桑那州烟草)植株叶片中化合物1和化合物2的浓度。由于在之前的大田试验中发现化合物2的信号质量更高,因此将重点放在化合物2的分析。将植株进行大田试验,通过对728株植株进行QTL分析发现,化合物2定位于连锁群3的一个单位点,这个位点含有NOPE1(NIATv7_g02911)(对玉米和水稻建立AMF共生是必需的)的同系物(图7 A-E),接种AMF后烟草根系中NOPE1转录水平更高,而烟草叶片中并无显著影响,突出了这些特异性代谢物对高通量筛选的价值。
3.5. 植物地上部AMF特异性布卢门醇可以广泛应用于各种植物和AMF互作研究
该团队对番茄、小麦和大麦植株接种/不接种AMF,同样发现根和叶中AMF特异性布卢门醇的变化,这与布卢门醇的运输假说相一致。此外,发现蒺藜苜蓿、马铃薯和二穗短柄草叶片中布卢门醇B也属于AMF特异性布卢门醇,这些布卢门醇均能在植株地上部聚集。也就是说,AMF特异性布卢门醇具有物种特异性,但在各类植物中也存在一套通用的模式。通过检测异形根孢囊霉、摩西管柄囊霉和变形球囊霉发现,这种影响并不局限于特定AMF菌种,而是具有普遍适用性(图7F)。
4. 结论
AMF能与大多数陆生植物建立共生关系,能改善植株生长势,因此调查AMF对宿主植物的影响至关重要。目前分析植物与AMF互作是通过对根系进行毁灭性采收或转录分析,这种方法较为笨拙且不利于大规模调查和商业应用。本文首次从AM共生体地上部发现了2种特异性布卢门醇(化合物1和化合物2),为今后AMF研究和植物育种提供了一种新的研究方法。
编辑∣冯曾威
审核∣姚青
广东省科学院微生物研究所菌种组-华南农业大学园艺学院土壤微生物组联合团队