写在前面
Doublets ：一个液滴或一个微孔中包含了2个或多个细胞。
对于高通量方法，在细胞捕获效率和双重比例之间存在折中，通常的做法是以1-5％的双重线为目标（Ziegenhain et al。，2017）（http://refhub.elsevier.com / S0098-2997（17）30049-3 / sref115） 。
在以前分析单细胞数据的时候，我其实从来没有注意过这样一个问题，即使知道可能会出现双峰，还是会天真地认为自己的专业知识是可以把这一部分避免掉，比如当同时在一类细胞中发现两种不同的细胞标记（他们之间不可以相互转化），我一般会果断的定义为污染。可是随着看的文献越来越多，发现细胞之间的特异性标记物越来越模糊，一些不能进行相互转化的细胞标记物可能存在于某一小类细胞中。
当然，这些ř包并不一定能够解决这些问题，多数的双峰软件对异质性较高的细胞之间的预测较好，但希望通过总结这类软件，提醒大家在定义过渡态细胞时一定要反复去验证，保证数据的真实性。
双峰软件包汇总
1.DoubletFinder
DoubletFinder是一种ř包，可预测单细胞RNA 测序数据中的双重峰。
实现DoubletFinder：Seurat> = 2.0（https://satijalab.org/seurat/）
DoubletFinder由Cell Systems于2019年4月出版：HTTPS：//www.cell.com/cell-systems/fulltext/S2405-4712（19）30073-0
安装（在R / RStudio中）
devtools::install_github('chris-mcginnis-ucsf/DoubletFinder')
依赖包
修拉（> = 2.0）
矩阵（1.2.14）
领域（9.6）
KernSmooth（2.23-15）
模式（0.7.0）
ROCR（1.0-7）
DoubletFinder概述
DoubletFinder可以分为4个步骤：
（1）从现有的scRNA-seq数据中生成人工双联;
（2）预处理合并的真实人工数据;
（3）执行PCA并使用PC距离矩阵查找每个单元的artificial k
最近邻居（pANN）的比例;
（4）根据预期的双峰数量排序和计算阈值pANN值;
缺点：DoubletFinder对同种类型细胞间的双重不敏感 - 即从转录相似的细胞状态衍生的双重。
例
## Pre-process Seurat object -------------------------------------------------------------------------------------------------
seu_kidney <- CreateSeuratObject(kidney.data)
seu_kidney <- NormalizeData(seu_kidney)
seu_kidney <- ScaleData(seu_kidney, vars.to.regress = "nUMI")
seu_kidney <- FindVariableGenes(seu_kidney, x.low.cutoff = 0.0125, y.cutoff = 0.25, do.plot=FALSE)
seu_kidney <- RunPCA(seu_kidney, pc.genes = seu_kidney@var.genes, pcs.print = 0)
seu_kidney <- RunTSNE(seu_kidney, dims.use = 1:10, verbose=TRUE)
## pK Identification ---------------------------------------------------------------------------------------------------------
sweep.res.list_kidney <- paramSweep(seu_kidney, PCs = 1:10)
sweep.stats_kidney <- summarizeSweep(sweep.res.list_kidney, GT = FALSE)
bcmvn_kidney <- find.pK(sweep.stats_kidney)
## Homotypic Doublet Proportion Estimate -------------------------------------------------------------------------------------
homotypic.prop <- modelHomotypic(annotations) ## ex: annotations <- seu_kidney@meta.data$ClusteringResults
nExp_poi <- round(0.075*length(seu_kidney@cell.names)) ## Assuming 7.5% doublet formation rate - tailor for your dataset
nExp_poi.adj <- round(nExp_poi*(1-homotypic.prop))
## Run DoubletFinder with varying classification stringencies ----------------------------------------------------------------
seu_kidney <- doubletFinder(seu_kidney, PCs = 1:10, pN = 0.25, pK = 0.09, nExp = nExp_poi, reuse.pANN = FALSE)
seu_kidney <- doubletFinder(seu_kidney, PCs = 1:10, pN = 0.25, pK = 0.09, nExp = nExp_poi.adj, reuse.pANN = "pANN_0.25_0.09_913")
## Plot results --------------------------------------------------------------------------------------------------------------
seu_kidney@meta.data[,"DF_hi.lo"] <- seu_kidney@meta.data$DF.classifications_0.25_0.09_913
seu_kidney@meta.data$DF_hi.lo[which(seu_kidney@meta.data$DF_hi.lo == "Doublet" & seu_kidney@meta.data$DF.classifications_0.25_0.09_473 == "Singlet")] <- "Doublet_lo"
seu_kidney@meta.data$DF_hi.lo[which(seu_kidney@meta.data$DF_hi.lo == "Doublet")] <- "Doublet_hi"
TSNEPlot(seu_kidney, group.by="DF_hi.lo", plot.order=c("Doublet_hi","Doublet_lo","Singlet"), colors.use=c("black","gold","red"))
详情可以点击DoubletFinder（https://github.com/ddiez/DoubletFinder）对自己的数据进行一下预测哦！
2. scrublet
小号 ingle- ç埃尔- [R做emover ublet小号
用于识别单细胞RNA-seq数据中doublets的Python代码。可以参考Cell Systems（https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S2405471218304745）上的文章或者bioRxiv（https：// www。 biorxiv.org/content/early/2018/07/09/357368）。
快速开始：
给定原始（非标准化）UMI计算矩阵counts_matrix，其中细胞为行，基因为列，计算每个细胞的双峰分数：
import scrublet as scr
scrub = scr.Scrublet(counts_matrix)
doublet_scores, predicted_doublets = scrub.scrub_doublets()
scr.scrub_doublets（）模拟数据的doublets，并使用k-最近邻分类器是每个转录组计算连续的doublet_score（在0和1之间）。分数是由自动设定的阈值生成
predict_doublets，一个布尔数组，预测是双峰时为真，否则为假。
最佳做法：
1.处理来自多个样品的数据时，分别对每个样品运行Scrublet.Scrublet用于检测由两个细胞的随机共包封形成的双峰，所以它可能在合并数据集上表现不佳;
2.在2-D嵌入（例如，UMAP或t-SNE）中可视化doublets预测;
安装：
要使用PyPI进行安装：
pip install scrublet
要从源安装：
git clone https://github.com/AllonKleinLab/scrublet.git
cd scrublet
pip install -r requirements.txt
pip install --upgrade .
详情可以点击scrublet（https://github.com/AllonKleinLab/scrublet）对自己的数据进行一下预测哦！
3.DoubletDecon
一种细胞状态识别工具，用于从单细胞RNA-SEQ数据中去除双峰。
具体步骤可以参见文章：
bioRxiv （https://www.biorxiv.org/content/early/2018/07/08/364810）
安装
if(!require(devtools)){
install.packages("devtools") # If not already installed
}
devtools::install_github('EDePasquale/DoubletDecon')
依赖包
DeconRNASeq
gplots
dplyr
MCL
clusterProfiler
mygene
tidyr
R.utils
的foreach
doParallel
stringr
source("https://bioconductor.org/biocLite.R")
biocLite(c("DeconRNASeq", "clusterProfiler", "hopach", "mygene", "tidyr", "R.utils", "foreach", "doParallel", "stringr"))
install.packages("MCL")#进行安装依赖包
例
以下数据的应用均来自于：
bioRxiv （https://www.biorxiv.org/content/early/2018/07/08/364810）
location="/Users/xxx/xxx/" #Update as needed
expressionFile=paste0(location, "counts.txt")
genesFile=paste0(location, "Top50Genes.txt")
clustersFile=paste0(location, "Cluster.txt")
newFiles=Seurat_Pre_Process(expressionFile, genesFile, clustersFile)
filename="PBMC_example"
write.table(newFiles$newExpressionFile, paste0(location, filename, "_expression"), sep="\t")
write.table(newFiles$newFullExpressionFile, paste0(location, filename, "_fullExpression"), sep="\t")
write.table(newFiles$newGroupsFile, paste0(location, filename , "_groups"), sep="\t", col.names = F)
results=Main_Doublet_Decon(rawDataFile=newFiles$newExpressionFile,
groupsFile=newFiles$newGroupsFile,
filename=filename,
location=location,
fullDataFile=NULL,
removeCC=FALSE,
species="hsa",
rhop=1.1,
write=TRUE,
PMF=TRUE,
useFull=FALSE,
heatmap=FALSE,
centroids=TRUE,
num_doubs=100,
only50=FALSE,
min_uniq=4)
详情可以点击：
**DoubletDecon **（https://github.com/EDePasquale/DoubletDecon）对自己的数据进行一下去除doublets哦！
4.DoubletDetection
DoubletDetection是一个Python3包，用于检测单细胞RNA-SEQ计数矩阵中的双峰（技术错误）。
安装
git clone https://github.com/JonathanShor/DoubletDetection.git
cd DoubletDetection
pip3 install .
运行基本双峰分类：
import doubletdetection
clf = doubletdetection.BoostClassifier()
# raw_counts is a cells by genes count matrix
labels = clf.fit(raw_counts).predict()
raw_counts是scRNA-seq计数矩阵（基因细胞），并且是阵列式的
标签是一维numpy ndarray，值1表示检测到的doublet，0表示单细胞，np.nan表示模糊的细胞。
分类器在以下情况运行最适合
数据中存在几种细胞类型;
它在聚合计数矩阵中每次单独运行;
参见jupyter notebook，链接为：
详情可以点击：
**DoubletDetection **（https://github.com/JonathanShor/DoubletDetection）对自己的数据进行一下预测吧！
