初学BCA蛋白浓度测定

2019-01-07 星期一 晴
1、周末答应了三个病人导诊。结果只来一个病人,给他安排了住院。其中一个病人直接爽约,另外一个病人临了给我打电话说没来了,我猜可可能是去了别的医院。
2、接着去细胞房关心细胞大哥。140细胞依旧不堪入目,黑色的点点逐日增加,严重影响了细胞的生长。将其拍摄下来,与同门商讨策略,据悉,给我细胞的师弟,他后来的细胞也污染得一塌糊涂。所以,我准备让师弟再邮寄细胞给我,重新来过。另外,510细胞今日也出现少许黑色的点点,希望不要在增加了。(上天保佑)
3、与YB公司电话联系,确认het-1a细胞成功下单,希望这周细胞就能够顺利抵达。
4、ZB兄弟告诉我,他昨天使用研钵地提取了组织RNA,而且浓度和纯度都达标了,真是可喜可贺啊,我虚心地向他求教了个中的经验。说实话,这位小兄弟挺厉害的,他不仅动手能力强,而且善于思考,将来一定大有前途!
5、中午吃饭的时候,和病理科的医生探讨了病理切片的事宜,随后决定先切50片的标本先行预实验,摸索抗体浓度、操作流程等。更欣慰的是,订购的50片的载玻片和目标抗体也相继送达了。
6、午饭过后,我开始细胞实验,把仅存的140细胞也复苏了。这次更换了新的1640、FBS、PBS、胰酶,这次如果在出现黑点点,只能说明细胞从头就污染了。细胞传代时的胰酶消化时间,以及传代比例还有待进一步摸索、改进。
7、按照既定的westernblot学习计划,准备开始实验操作。我把污染相对较轻的140细胞消化下来,用以提取总蛋白。同样510细胞也留取了2管用以提蛋白。

细胞总蛋白的提取:
1.倒掉培养液,PBS洗两遍。
2.每瓶细胞加1ml 胰酶消化细胞,2-3分钟,待细胞变圆,细胞间隙变大,震荡细胞可漂浮,加入2ml培养基终止消化,离心,弃上清。加入1mlPBS洗涤细胞,然后转移至EP管,离心,弃上清。
3、配置RIPA裂解液:按1ml裂解液加10μl 的PMSF(100mM),离心、摇匀置于冰上。
4.每个EP管加150μl含PMSF的裂解液,冰上裂解15min,为使细胞充分裂解。
5.于4℃下12000rpm离心15min。(提前开离心机预冷)
6.将离心后的上清分装转移到1.5ml的离心管中放于-20℃保存。

8、随后开始BCA蛋白浓度测定。

BCA蛋白浓度测定:
1、稀释BSA标准品以制作标准曲线:取8支EP管,每管加30ulPBS,第一管加30ulBSA,混匀后再取30ul至第二管,依次倍比稀释,最后一管不加为空白(即本底值)。则8个标准品的浓度分别为2ug/ul、1ug/ul、0.5ug/ul、0.25ug/ul、0.125ug/ul、0.0625ug/ul、0.03125ug/ul、0。
2、【忘记稀释了】5倍稀释样品蛋白:取3支EP管(3个样品),各管加40ul RIPA,再分别取10ul样品在各管中稀释
3、将8个标准品和稀释待测样品各加25ul于96孔板中。
4、配制BCA工作液:每个样品做2个重复(第一次做,未做2个重复),再加上8个标准品,一共14个孔,按16个孔算,以防加样损失。则需A液:200ul×16=3200ul,B液:4400ul/50=88ul,计算好所需体积后在一干净试管中将A、B工作液混匀。
5、混匀后立即向各孔中加入200ul配制的BCA工作液,振荡30min,37℃孵育30min。
6、酶标仪562nm下测定各样品和BSA标准品的吸光度值,作出标准曲线,计算出待测样品的浓度。【由于未稀释,结果浓度太高远离标准曲线范围,机器未能给出读数】
7、根据各样品浓度计算1×loading buffer体积,将各样品浓度调为一致;并计算5×loading buffer的体积,加入各管中。混匀后沸水煮15min,冰上分装,存于-20℃。

8、已经预约了明天的WB,希望顺利。

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