文献阅读:使用无转基因和逐步定义的悬浮培养条件从hESC大规模生成MK

一、精读文献

文献题目

Large-scale generation of megakaryocytes from human embryonic stem cells using transgene-free and stepwise defined suspension culture conditions
年份:2021
作者:北京放射医学研究所血液学与生物化学实验实验室 张博文
期刊和影响因子:Cell Prolif 5.4
文章链接:* PMID: 33615584 PMCID: PMC8016648 DOI: 10.1111/cpr.13002

结论:

  1. MACS 分离柱,将幼稚T细胞与抗体一起孵育。然后,T细胞/抗体混合物通过MACS分离柱,其中CD8 + T细胞将粘附在柱上,CD4 + T细胞将被洗脱。
  2. 通过使用聚苯乙烯CellSTACK培养室,CellSTACK培养室具有636厘米的大培养底面积2和超低附着表面,推荐用于悬浮细胞的大规模扩增。在整个过程中为MK定义了三维(3D)和球状分化模型。在我们的培养系统中,来自hESCs的诱导细胞显示出MKs的特征,以及proPLT的形成和PLT释放。
  3. ESC多能相关蛋白OCT4,SOX2和NANOG。中胚层标记蛋白的高表达水平,如BRACHYURY(BRA)和ROR2。[图1c]
  4. 2D培养通过菌落形成单位(CFU)-MK测定,我们观察到第14天出现具有高表达CD41+的菌落。免疫荧光染色结果表明,大多数分化细胞共表达CD41a和VWF,约55%MK样细胞,高表达β1-管状蛋白,这是MK能够产生PLT功能的关键特征。然而,单层分化方案导致MK产量低,约为5 MKs / hESC。
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  1. 3D悬浮培养诱导这些EB在悬浮3D状态的逐步诱导培养基中分化为中胚层祖细胞,血源性内皮细胞,造血祖细胞和MK,而无需CD34免疫系选择步骤。

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  2. 来自hESCs的MK以3D诱导的方式表达和分泌细胞因子-这些结果提供了有说服力的证据,表明许多细胞因子是由来自hESCs的MK合成和分泌的,并且从3D诱导过程中获得的MK更成熟,具有更高水平的MK特征细胞因子分泌。


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  3. 从hESCs诱导的细胞堆培养的MK产生前体和PLT,结果表明,诱导的 PLTs 强烈表达 CD42 ,并与 CD41 , CD110 , PF4 , VWF 和素共表达。我们使用流式细胞术来分析这些分化的PLT的表面标志物。我们发现>80%的细胞碎片与CD41a和CD61共表达,>50%的细胞碎片与CD41a和CD42b共表达,其表型与外周血PLT相似。与血液PLTs相比,这些PLTs在纤维蛋白原上具有相似的聚集能力。凝血酶刺激后,诱导和天然PLTs均显示CD62P表达和凝块聚集增加,表明凝血酶可以诱导PLTs的活性状态。


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  4. 对于造血细胞的大规模生产,自旋EB方法的操作相对耗时,效率低下且难以产生超过10^7个MK

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