小RNA 克隆和高通量测序的结合是纯化和鉴别细胞或组织中小RNA 的有效先进技术。本方案描述了用于Illumina Genome

Analyzer 高通量分析的19 ~ 29 个核苷酸小RNA 的克隆方法，通过聚丙烯酰胺凝胶从总RNA 样品中分离纯化小RNA,

并进行两步连接反应：小RNA3′ 端与5′ 腺苷酸DNA 连接物的连接；以及小RNA5′ 端与RNA 连接物的连接。此后，通过反转录和PCR

制备高通量测序所需的小RNA cDNA 文库。图1 中的流程描述了建立cDNA 文库的具体步骤，图 2 描述了建立小RNA 文库的具体步骤。

试剂

丙烯酰胺： 双丙烯酰胺( 19 : 1, 40%,m/V)

过硫酸铁( 10%, m/V)

绷砂／硐酸缓冲液( 5X, pH8.6 )

氯仿

二甲基亚砜( DMSO )

DNA 分子质量标准（100bp )

dNTP 混合物（每种浓度为10mmol/L）

3’端连接反应缓冲液

乙醇(100％和80% )

溴化乙锭

Ficoll-Orange G 上样缓冲液( 6 X)

甲酰胺上样缓冲液

肝糖原( 20μg/μL)

连接物： 3’ 端连接物( 5′-rAppTCGTATGCCGTCTTCTGCTTGT/ddc/-3′)

5’端连接物( 5′-GUUCAGAGUUCUACAGUCCGACGAUC-3′)

M13 的正、反向引物

mirVana miRNA 分离提取试剂盒或TRizol 试剂

GTG 琼脂糖凝胶

苯酚（pH7.9）

酚： 氯仿： 异戊醇( 25 : 24 : 1,V/ V/ V, pH 8.0 )

PuReTaq Ready-To-Go PCR Beads

反转录引物（ 5′-CAAGCAGAAGACGGCATACGA-3′)

RNA Century Marker

总RNA 样品

小RNA PCR 正向引物( 5′-AATGATACGGCGACCACCGACAGGTTCAGAGTTCTACA

GTCCGA-3′)

小RNAPCR 反向引物( 5′-CAAGCAGAAGACGGCATACGA-3′ )

乙酸钠(3mol/L, pH5.2 )

氯化钠( 0.3mol/L 和0.6mol/L）

高碘酸钠( 200mmol/ L）

Superscript III 反转录酶

SYER Gold ( 10 000 X)

合成的小RNA 分子质量标准( 18 个、30 个和60 个核苷酸）

T4RNA 连接酶2 ，截短的或T4RNA 连接酶2 ， 截短的K2276

T4RNA 连接酶和10XT4RNA 连接酶缓冲液

TAE 缓冲液( 50 X 和1 X)

TBE 缓冲液(5X 和0.5X)

四甲基乙二胺( TEMED )

TOPOTA 克隆试剂盒

尿素

设备

离心机

玻璃托盘

加热模块

微量离心管(2.0mL, 1.5mL)

NanoDrop 分光光度计

PCR 管( 0.5mL)

聚丙烯酰胺凝胶装置

刀片（新）

Thermo 热循环仪

紫外灯(302nm)

涡旋振荡仪

方法

总RNA 纯化

1  按照使用说明书，用mirVana miRNA 分离提取试剂盒或TRlzol 试剂纯化总RNA, 并溶解于水中。

2 通过紫外分光光度计检测RNA 的浓度和纯度。

从总RNA 中纯化l9 ~ 29 个核苷酸的小RNA

3 配制含8mol/L尿嘧啶的15 ％变性聚丙烯酰胺凝胶（长20cm X 宽16cm X 厚1.5mm ),用6 孔梳子（左右两边的两个小孔，深17mmX 宽5mmX 厚1.5mm, 小孔上样分子质量标准，中间4 个大孔用来上样品，深17mmX 宽30mmX 厚1.5mm)

4 在0.5 X TBE 缓冲液中35W 恒定功率预电泳30 min 。

5 用50μL 水稀释100μg 总RNA, 并加入等体积的甲酰胺上样缓冲液进行混合。用甲酰胺上样缓冲液稀释人工合成的18 核苷酸和30 核苷酸RNA 寡核苷酸，并配制成终浓度为1μmol/L, 用作小RNA 分子质量标准。

6 95 °C 加热样品和分子质量标准5min, 然后置冰上冷却。

7 洗涤聚丙烯酰胺凝胶孔以洗去尿嘧啶，每个大孔中加入总RNA 样品100μL（步骤5) 。聚丙烯酰胺凝胶边缘小孔加入10μL (10pmol 每孔）小RNA 分子质量标准混合液（来自步骤5) 。

8 0.5 X TBE 缓冲液中恒定功率电泳，至溴酚蓝距离孔缘约6cm 。

9 电泳完成后，室温下用SYBR Gold （用0.5 X TBE 缓冲液1 : 10 000 稀释）将胶固定在洁净的玻璃托盘中5min 。将胶固定于玻璃托盘之前必须在托盘中加入染色剂。

10 在302nm 紫外灯下观察RNA , 用新刀片切下18 ~ 30 个核苷酸之间且包含RNA 的凝胶，并将切下的凝胶放入预先称量好的2 .0mL 微量离心管中。

11 每100mg 凝胶中加入300μL 0.3mol/L 氯化钠，室温下旋转过夜以洗脱小RNA 。

12 加入1μL 20μg/μL 糖原和3 倍体积的无水乙醇沉淀小RNA 。涡旋混合，将混合液置于－20 °C 或－20 °C 以下保存3h 。4 °C 最大转速离心30min, 收集底部沉淀。

13 用1mL80％乙醇洗涤沉淀1 次，洗去残留盐分。4 °C 最大转速离心15min 以回收小RNA 。打开离心管管口，在实验台上静置数分钟，尽可能除去80％乙醇。

14 将沉淀物溶解于13μL 无核酸酶的水中。

氧化法富集3′ 端修饰的小RNA （可选）

与动物miRNA 不同，动物Piwi 相互作用RNA（ piRNA) 和苍蝇内源性siRNA 的3’端都被2′-O－甲基化，从而降低其与3’端连接物的反应效率。此外，相同细胞中2′-O－ 甲基化的piRNA 或siRNA 丰度通常较miRNA 丰度低。通过氧化反应将miRNA 末端的2′, 3’羟基氧化成醛基，从而阻断其与3’ 端连接物的连接，并增强2′-O－ 甲基化小RNA 的测序效率。

16 移液管轻轻吹打混合溶液，离心1 ~ 2 s 收集试管底部反应物。

17 反应物25 °C 孵育30min 。

18 加入229μL 水、1μL 20μg/μL 糖原以及3mol/L 乙酸钠( pH5.2) 30μL 。移液管轻

轻吹打混匀，并加入3 倍体积的无水乙醇。涡旋以混合溶液，－20 °C 或－20 °C 以下保存过夜。

19 4 °C 最大转速离心30min, 收集试管底部沉淀。

20 用1mL 80％乙醇洗涤沉淀物以清除残留盐分。4 °C 最大转速离心15min 以回收小RNA 。打开管口，实验台上静置数分钟，使80％乙醇尽可能挥发干净。

21 将沉淀物溶解于13μL 无核酸酶的水中。

小RNA 与3’端连接物连接

24 轻轻敲打试管A 和B 外壁，混匀。离心1 ~ 2s, 使试剂置于试管底部。

25 试管A 和B 均4 °C 过夜。

26 试管A 中加入20μL 甲酰胺上样缓冲液（来自步骤25) 。

27 试管B 中加入180μL 甲酰胺上样缓冲液，配制3 端连接分子质量标准（ 来自步骤25) 。

28 试管A 和B 于95 °C 加热5min, 置冰上冷却。

3’端连接小RNA 纯化

29 配制含8mol/L 尿嘧啶的15 ％变性聚丙烯酰胺凝胶（ 长20cmX 16cmX 1.5mm) ，用20 孔梳子（孔大小： 深17mmX 宽5mmX 厚1.5mm) （ 方案7) 。

30 0.5XTBE 缓冲液中35W 恒定功率预电脉30min 。

31 洗去胶孔中的尿素，每孔加入40μL 3’端反应样品（来自步骤28) 。不同样品之间至少空一个孔，避免交叉污染。胶左右两侧边缘孔上样40μL3 端连接分子质量标准（来自步骤28) 。

32 0.5 X TBE 缓冲液恒定功率20W 电泳，至溴酚蓝移至胶底部。

33 按照步骤9 所描述的方法将胶固定好。

34 302nm 紫外灯下观察RNA, 对应在两个分子质量标准之间的位置，用新刀片切下包含RNA 的凝胶（图3）。将切下的凝胶放入预先称重的1.5mL 微量离心管中。

35 如步骤11 ～步骤14 所述，对3′ 端连接的小RNA 进行洗脱、沉淀并溶解。

连接小RNA与5’端连接物

36 在1.5mL 的微量离心管中，一次加入下列试剂，建立20μL 5′ 端连接反应体系：

37 轻轻敲打试管外壁，混匀。离心1 ~ 2s, 使试剂处于试管底部。

38 4℃过夜。

39 加入等体积的甲酰胺上样缓冲液， 终止反应。95°C 加热5min, 置冰上冷却。

5’端连接小RNA 纯化

40 如步骤29 和步骤30 所描述，配制10％的变性聚丙烯酰胺凝胶并预电泳。

41 向78μL 甲酰胺上样缓冲液中加入1μL ( 10pmol) 合成的60 个核酸的RNA 寡核苷

酸与1μL (1μg) RNA Century 分子质量标准，配制成RNA 分子质量标准。95°C 加热5min,置冰上冷却。

42 洗去胶孔中的尿素，向各个孔中加入40μL 5′ 端连接反应样品（步骤39 ) ，不同样品之间至少空一个孔，避免交叉污染。左右两侧边缘孔中加入40μLRNA 分子质量标准。

43 如步骤32 和步骤33 所述，电泳并固定。

44 302nm 紫外灯下观察RNA, 并用新刀片切下60 ~ 100 核苷酸包含RNA 的凝胶，

放入预先沉重的1.5mL 微量离心管中。

45 如步骤11 ～ 步骤13 所述，洗脱并沉淀5′ 端连接的小RNA 。

46 将沉淀物溶于20μL 水中。

反转录

47 向含有20μL 5′ 端连接的小RNA （来自步骤46) 试管中加入1 μL (100pmol) 反转

录引物。

48 72 °C 孵育2min 。

49 室温下最大转速离心lmin, 置冰上冷却。

50 混合以下试剂，配制RT 混合液：

51 向试管中加入16.8μL RT 混合液，并将其分装成两管：＋ RT 和－ RT, 每管18μL 。

52 向＋ RT 管中加入2μL (400U) 的SuperScript 反转录酶Ⅲ ，向－ RT 管中加入2μL 水。

53 50 °C 孵育1h，再70 °C 加热15min 灭活反应。

cDNA 文库扩增

54 混合以下试剂，配制引物混合物：

55 在3 个含有PuReTaq Ready-To-Go PCR Bead 的0.5mLPCR 试管中，每管分别加入23μL 的引物混合物。

56 向3 个PCR 管中分别加入2μL + RT 反应液、－RT 反应液（作为阴性对照，检测

PCR 扩增来自模板而不是其他cDNA) ，或水（作为PCR 阴性对照， 检测PCR 试剂是否污染） 。

57 轻敲试管外壁，混匀溶液。离心1~2s, 使试剂处于试管底部。

58 将试管放入热循环仪中，按下列程序进行cDNA 文库扩增：

i.  94°C      2min

ii. 94  °C    15s

iii. 58 °C    30s

IV. 72 °C    30s

v 重复步骤58ii 和iii 4 个循环或更多。

vi. 94°C    15s

vii. 60 °C    30s

viii. 72  °C  30s

ix 重复步骤vi~v iii 16 个循环或更多。

X. 4 °C 保存

xi. 结束

59 PCR 结束后，向各个PCR 管中加入5μL 6 X Fi coll-Orange G 上样缓冲液，涡旋振荡混合。

60 用含0.5μg/mL 溴化乙锭的1 X TAE 缓冲液配制2% NuSieve GTG 琼脂糖凝胶（长1cm X 宽15cm X 厚12mm ) 。

61 每孔中加入步骤59 中的PCR 样品30μL, 不同样品之间至少空一个孔。

62 左右两侧边缘孔中各加入10μL (1μg) 的100bp DNA 分子质量标准。

63 在1XTAE 缓冲液中洹压100V 电泳，至Orange G 染料移至约胶长3/4 处（约8 0min ) 。

64 302nm 紫外灯下观察条带，用新刀片切下所需DNA 条带并放入预先称重的2.0mL微量离心管中。

65 每100mg 凝胶中加入100μL 0.6mol/L 氯化钠。

66 70 ℃ 孵育至胶完全溶解（约10min) 。

67 加入等体积苯酚(pH 7 . 9 ，预热至室温） 。涡旋振荡20s ， 室温下最大转速离心15min,将水层与有机层分离。

68 将水层转移至一个新的1.5mL 微量离心管中，加入等体积酚：氯仿： 异戊醇混合物(25 : 24 : 1,V/V/V, pH 8.0) ，涡旋振荡20s 。室温下最大转速离心15min, 分离水层和有机层。

69 将水层转移至一个新1. 5mL 微量离心管中，加入等体积氯仿，涡旋振荡20s 。室温下最大转速离心15min, 分离水层和有机层。

70 将水层转移至一个新1.5mL 微量离心管中，加入3 倍体积乙醇。涡旋振荡，混匀，-20 °C 或－20 °C 以下放置3h 。4°C 最大转速离心30min, 收集底部沉淀。

71 用lmL80％乙醇洗涤沉淀，除去残余盐分。4 °C 最大转速离心15min, 回收DNA 。打开离心管口并在实验台上静置数分钟，使乙醇尽可能挥发。

72 将DNA 沉淀溶于20μL 无核酸酶的水中，应用NanoDrop 分光光度计检测DNA 浓度。标准浓度范围为20 ~ 50ng/ μL , －2 0 °C 储存DNA 溶液（如小RNA 文库）至下次高通量测序时使用。

Sanger 测序法验证小RNA 文库（可选）

73 按照使用说明书，进行TOPO TA 克隆，每个小RNA 文库中挑取20 个或更多个克隆。

74 应用插入片段两侧的引物（ 如Ml3 正向、反向引物），进行菌落PCR 。

75 利用1.5% 琼脂糖凝胶对PCR 产物进行鉴定，然后对PCR 产物逐个克隆进行测序。

疑难解答

问题： 核糖体RNA 交叉污染。

解决方案： 核糖体RNA 交叉污染表明制备的总RNA 可能发生降解。而降解可能主要发生于步骤14 之前。如果起始总RNA

质量没有问题，那么降解可能主要发生于凝胶纯化过程（步骤3 ～步骤11) 。实验全程必须戴手套并经常更换，所用的试剂、试管和移液器必须无RNA

酶污染。RNA 凝胶电泳的TBE 缓冲液和配胶设备必须是独立专用，同时凝胶纯化前必须彻底清洗配胶设备。如果起始总RNA

发生降解，需重新制备高质量的总RNA 。

问题：小RNAcDNA 文库被其他生物小RNA 污染。

解决方案： 这种污染可能主要发生生于凝胶纯化过程中。实验全程必须戴手套并经常更换，凝胶设备和SYBRGold 染色所用托盘在使用之前必须彻底清洗。

问题： Sanger 测序发现，随意挑取的2 0 个克隆中有2 个或2 个以上没有插入小RNA 。

解决方案： 这主要是由于纯化过程中扩增文库被PCR 引物二聚体污染。切胶必须小心，如果有必要，可以用6%～ 10％的非变性聚丙烯酰胺凝胶( 29 : 1, 丙烯酰胺：双丙烯酰胺）代替2% NuSieve GTG 琼脂糖凝胶以提高凝胶分离效果。